De nucleïnezuur-extractie is de hoeksteen van moleculaire biologie experimenten.Veel onderzoekers zijn in de war., met name bij het oplossen van onvoorziene problemen. This article demystifies the scientific principles underlying nucleic acid extraction kits while providing practical troubleshooting guidance to transform this essential technique from a "black box" operation into a predictable, een efficiënt proces.
De meeste commerciële nucleïnezuur-extractie-kits gebruiken silica-membraan spinkolomtechnologie, met vijf kritieke fasen: cellyse, nucleïnezuurbinding, wassen en zuiveren, drogen,en uiteindelijke elutieElke stap bouwt voort op de vorige, wat betekent dat elke misstap de hele extractie in gevaar kan brengen.
Een effectieve cellyse is de cruciale eerste stap.maar bevatten meestal hoge concentraties chaotropische zouten die twee doeleinden hebben:
Veel voorkomende chaotrope zouten zijn guanidinehydrochloride, guanidine thiocyanate, ureum en lithiumperchlorate.Afhankelijk van het soort monsterProteinase K verteert effectief eiwitten in nucleïnezuurpreparaten, met name onder denatureringsomstandigheden.hoewel de activiteit ervan onder denatureringsomstandigheden afneemt.
Plasmide-extractie verschilt aanzienlijk van RNA- of genomisch DNA-isolatie.Als er onmiddellijk chaotropische zouten worden toegevoegd, komen alle DNA-typen vrij.Daarom introduceren plasmideprotocollen typisch chaotrope stoffen na de eerste cellyse.
Behalve de lysis, vergemakkelijken chaotropische zouten de binding van nucleïnezuur aan silica-kolommen.Silica-kolommen bevatten hars die selectief bindt aan DNA of RNA, afhankelijk van de zoutconcentratie en andere factorenDe resulterende nucleïnezuren vertonen een hoge zuiverheid en zijn geschikt voor kloning, lange-leessequencing en andere toepassingen.
De concentratie van ethanol is van cruciaal belang, omdat overtollige ethanol afgebroken materiaal en kleine moleculen uitstort en de absorptie van A260 beïnvloedt.Onvoldoende ethanol kan de zoutverwijdering van membranen belemmerenDe met de kit geleverde ethanolvolumes zijn vooraf geoptimaliseerd, maar als het afbrokkelende DNA de A260-metingen lijkt te vervormen, kan een heroptimalisatie van de ethanolconcentratie helpen.Doorstroming oplossingen kunnen worden opgeslagen voor neerslag om verloren nucleïnezuren te herstellenWanneer bij de lysis SDS-bevattende detergenten worden gebruikt, dient NaCl als een effectief neerslagmiddel om verontreiniging van het detergentiemiddel te voorkomen.
Na het centrifugeren van lysat door siliciummembranen binden de doel-nucleïnezuren zich aan de kolommen, terwijl eiwitten en polysacchariden in de doorstroming blijven.de membranen behouden resterende eiwitten en zoutenPlantenmonsters kunnen polysacchariden en pigmenten achterlaten; bloedmonsters veroorzaken vaak bruin of geel verkleuren.
De eerste wasbeurt bevat meestal lage chaotropeconcentraties om resterende eiwitten en pigmenten te verwijderen.gevolgd door ethanolwassen om zouten te verwijderenVoor monsters die aanvankelijk weinig eiwitten bevatten (bijv. plasmidpreps of PCR-productzuivering) kan het alleen nodig zijn om met ethanol te wassen.Sommige kits raden aan met dubbel ethanol te wassen.Residuele zouten remmen de elutie, verminderen de opbrengsten en verhogen de A230-metingen die de A260/230-verhoudingen onderdrukken.
De meeste protocollen omvatten centrifugatie na wassen om restethanol uit de kolommen te drogen.Het toevoegen van 10 mM Tris buffer of water en vervolgens het rehydrateren van nucleïnezuren voor de afgifte van het membraanResiduele ethanol voorkomt volledige rehydratatie en elutie.Bijvoorbeeld wanneer het monster zich niet in agarose-gelputten vestigt (zelfs bij aanwezigheid van verf) of bij -20°C niet kan bevriezen..
Bij de laatste DNA-extractie wordt er zuiver nucleïnezuur vrijgekomen uit silicium.DNA blijft stabieler in zwakke alkalische pH en lost sneller op in buffer dan in waterZelfs DNA-afscheidingen gedragen zich op dezelfde manier. Water vertoont meestal een lagere pH (4-5), en DNA met een hoog moleculair gewicht kan niet snel volledig herhydrateren.laat buffer enkele minuten op de membranen zitten voordat hij gecentrifugeerd wordtVoor toepassingen die intact DNA met een hoog moleculair gewicht vereisen (bijv. lange-leessequencing), zijn elutiebuffers optimaal. RNA tolereert een zwak zuur pH en lost zich gemakkelijk op in water,water het voorkeurverdunner maken.
Zelfs na het volgen van standaardprotocollen kunnen extracties verschillende problemen opleveren:
Onvolledige lysis kan zich manifesteren als onverwachts lage opbrengsten, onvolledige eiwitoplossing of slechte A260/230-verhoudingen.Dit suggereert dat bepaalde bestanddelen van het monster niet volledig lizen of oplossen tijdens de extractie.Het onderscheid tussen onvolledige lysis en verontreiniging of afbraak vereist een zorgvuldige analyse van de extractieomstandigheden, met inbegrip van de samenstelling van de lysisbuffer, de incubatieparameters,en potentiële interfererende stoffenBijvoorbeeld kunnen slechte A260/230-verhoudingen wijzen op residuele zouten na binding of onvoldoende wassen in plaats van onvolledige lysis.Het aanpakken van onvolledige lysis kan het optimaliseren van de lysisbuffercomponenten vereisen., incubatietijden, of met aanvullende mechanische/enzymatische lyse methoden.
Gespecialiseerde technieken zijn gericht op het verwijderen van humumstoffen en andere interferenten die samen kunnen zuiveren met nucleïnezuren uit milieusamples.Deze omvatten gespecialiseerde extractiebuffers die chelaatstoffen bevatten (e.g..g., EDTA) om cationen selectief te binden en verwijderen.Voorbehandelmethoden zoals differentiële centrifugatie of filtratie kunnen helpen bij het verwijderen van grotere deeltjes uit omgevingsmonsters vóór nucleïnezuur-extractie, waardoor de interferentie tijdens de bindingsstappen wordt verminderd.
Bepaalde monsters (bv. weefsels of vetrijke materialen) bieden specifieke uitdagingen.Weefselmonsters vereisen vaak extra mechanische verstoring of enzymatische vertering om volledige lysis en nucleïnezuurvrijgave te garanderen.. Lipidenrijke monsters kunnen de zuivering bemoeilijken, omdat lipiden de binding van nucleïnezuur aan kolommatrices kunnen verstoren.het optimaliseren van zuiveringsprotocollen, of met behulp van speciaal ontworpen kits.
Oorspronkelijk gepubliceerd op 28 juni 2010. Herzien en opnieuw gepubliceerd in mei 2021 en maart 2024.
Contactpersoon: Ms. Lisa